实验操作流程：

成骨诱导培养液配备与诱导操作： 

1、准备含10%FBS的α-MEM培养液； 
2、在备好的α-MEM培养液中添加50μM 抗坏血酸, 10mmβ-磷酸甘油和100nm地塞米松； 
3、准备6孔培养板，将P4细胞按照5×103个/平方厘米的规格接种于原始α-MEM培养液中； 
4、待细胞长至基本融合后，更换上述制备完成的成骨诱导培养液； 
5、每三天换液一次，细胞长至7天时进行碱性磷酸酶染色； 
6、二十八天后再进行矿化结节的茜素红染色。 

素红染色方法介绍： 

1、去除细胞当前使用培养液，使用PBS清洗两次； 
2、使用10%甲醛室温固定15分钟，完成后使用重蒸馏水冲洗两次； 
3、按照1ml/孔加入40mM的茜素红染色液，室温孵育20min并轻微振荡； 
4、清除掉没有完全结合的染料，用重蒸馏水漂洗并振荡5min重复4次； 
5、倾斜放置2min,吸取多余的重蒸馏水；倒置显微镜观察拍照记录。

成脂诱导培养液配备与诱导操作： 

1、配置FBS10%含量的HG-DMEM培养液； 
2、在配制完成的HG-DMEM培养液中加入1μM地塞米松,10μg/ml胰岛素，200μM吲哚美辛和0.5mM IBMX； 
3、准备6孔培养板，将P4细胞按照2×104个/平方厘米的规格接种于原始HG-DMEM培养液中 
4、待细胞长至基本融合后，更换上述制备完成的成脂诱导培养液培养2天，在用只含有10μg/ml胰岛素的成脂维持培养液培养1天，如此交替循环培养至14天，使用红油O染色。 

红油O染色方法介绍：

1、去除细胞使用的当前培养液，使用PBS清洗两次； 
2、27.5%甲醛室温固定20分钟； 
3、重蒸馏水清洗3此，空气中干燥； 
4、加入0.5%的红油室温孵育一小时； 
5、配制70%乙醇溶液清洗3次； 
6、倒置显微镜观察拍照记录。
 

客户提供：

细胞种类和诱导分化细胞类型。

交付标准：

1、成功定向诱导分化的细胞。

2、完整项目报告（材料、试剂、仪器、方法、数据分析、实验结果）。